솃 寃궗꽱꽣 寃궗쓽猶 吏꾨떒寃궗쓽猶 옄沅곴꼍遺븫寃궗 怨좉컼꽌鍮꾩뒪 SITEMAP CONTACT US ENGLISH


검체채취 및 취급요령

- 검사결과의 품질은 적절한 검체 채취와 취급방법에 따라 영향을 받습니다.
- 위생 및 안전상 주의가 반드시 필요하므로, 모든 검체는 감염성 물질로 간주하여 주시기 바랍니다.
- 모든 검체는 의뢰하시기전 새지 않도록 잘 밀봉하시고 지정 용기를 이용하여 주시기 바랍니다.



-조직, 세포 병리 검사는 인체의 적출된 조직 및 세포를 이용하여 병의 원인을 확인하기 위한 목적입니다.


1. 조직 검체의 고정 및 운송 방법
- 수술조직을 새지 않는 용기에 옮긴 후 고정액으로 10% 중성 포르말린 (formalin)을 넣어 조직이 완전히 담기게 하십시오.
- 포르말린 고정액은 조직의 약 10배 정도의 양으로 넣으십시오.
- 포르말린을 사용하는 목적은 적출한 조직의 자가융해 및 건조를 방지하기 위한 것이며, 검체 보존성이 뛰어납니다.
- 만약 부위가 다른 곳에서 적출한 조직이라면 각각 다른 용기에 넣고 고정하십시오.
- Punch biopsy 등 작은 생검 조직은 거즈나 여과지에 붙여 유실되지 않도록 처치한 후 고정하십시오.
- 각 적출물에 따른 고정 방법은 다음과 같습니다.
-자궁 (Uterus) 등 큰 장기 : 용기의 절단면을 아래로 하여 넣고, 고정액을 충분히 넣어 잠 기도록 하십시오.
-소화관 (Stomach) 등 점막 장기 : 점막 부위를 밖으로 뒤집어 얇은 거즈로 잘 싸서 고정하 십시오.
-폐 (Lung) : 기관지 말단으로부터 고정액을 주입하여, 가능한 폐포를 부풀려 공기를 빼고 조직 사이까지 골고루 고정액이 들어가도록 하십시오.
-생검조직 (Punch biopsy) : 천자한 조직의 수분을 제거하고 거즈나 여과지에 10초 정도 올려 놓은 후, 그대로
포르말린에 고정하십시오. 조직이 작으므로 건조되지 않도록 주의하십시오.

 

2. 세포 병리검사
세포 검사용 검체는 세포 변성을 방지하여 정확한 세포 관찰을 할 수 있도록 95% ethyl alcohol 또는 cytospray등
피복고정제 (coating fixation)로 반드시 고정하십시오.
95% 에탄올 (Ethyl alcohol)로 고정하는 경우 적어도 30분 이상 고정해야 합니다.
피복고정제 (coating fixation)는 도말된 슬라이드로부터 25-30 cm 거리를 둔 위치에서 분무합니다.

각 검체 종류에 따른 관리 방법은 다음과 같습니다.
1) 부인과 재료 <자궁 질부, 경부, 내막 등>
검체는 한번에 많이 채취한 후 slide에 얇고 균일하게 도말하고, 세포 고정제를 분무하여 고정하십시오.
Cytobrush를 사용하여 채취하십시오.
검체 채취 하루전에 질내 치료나 피임약제 등의 사용을 금해 주십시오.
검체 채취전 외상 치료나 biopsy 등을 행하지 마십시오. 혈액의 RBC가 슬라이드에 도말되어 판독이 어려워집니다.
액상세포용기를 사용하는 경우 Cytobrush로 채취한 모든 세포를 액상용기안의 액체에 풀어 넣은 다음
새지 않게 뚜껑을 잘 막아 보내십시오.

2) 객담 (Sputum)
아침 첫 객담을 받아 두 장의 slide 사이에 넣고, 전후 좌우로 비벼 펼친 다음, 즉시 95% ethyl alcohol에 고정하십시오.
채취 시 타액이 섞이지 않도록 주의하고, 객담 자체를 의뢰할 경우 12-24 시간 이내에 보내주십시오.

3) 흉수액 (Pleural fluid), 복수액 (Ascitic fluid) 등 액체
가능한 전량을 혼합하여 원심한 후 egg albumin을 침사에 첨가하여 slide에 도말하고, 즉시 95% ethylalcohol로
고정하십시오.
도말이 불가능할 때 검체를 전부 냉장 보관하여 12-24시간 이내에 보내십시오.

4) Urine, CSF 등 protein 양이 적은 검체
원심분리기에서 1500 rpm으로 10분간 원심하여 침전물을 slide에 도말한 후 고정하여 보내십시오.
원심이 불가능 할 경우 검체에 50% ethyl alcohol을 검체의 양과 같은 양으로 혼합한 후 그대로 보내십시오.

5) 천자액 (Aspiration biopsy)- 유선, 갑상선, 림프액 등
2-4장의 Slide에 도말 후 일부는 즉시 고정하고, 일부는 slide 자연건조 후 고정하십시오.
검체량이 적은 경우 주사바늘과 주사통을 생리식염수로 세정하고 원심하여 침전물을 도말한 후 고정하십시오.

6) pH가 낮은 검체-위액, 담즙 등
검체는 얼음을 채운 후 box에 보관하고, 가능하면 수 분 이내에 원심하여 도말 slide를 만들어 고정하십시오.
고정이 불가능할 경우 70% ethyl alcohol을 검체의 1/3~1/4 정도의 양이 되도록 넣은 후, 얼음 box에 넣어 즉시 보내십시오.

 

검사결과에 오차를 초래하는 요인
:응고(Clot)
-항응고제와 혈액이 충분히 혼합되지 않을 경우 혈액학적 검사시 부분응고(Partial clot)로 인한 부정확한 결과를 초래합니다.
따라서, 항응고제가 든 용기에 채혈할 경우 충분히 잘 혼합하여(1~2분정도) 가능한 빠른 시간내에 의뢰해 주십시오.
:용혈(Hemolysis)
용혈로 인하여 Hemoglobin과 다른 세포내 물질이 반응에 영향을 미치며 결과치의 상승 등을 초래합니다.
따라서, 채혈과 시험관 분주시에 주의하여야 합니다. 주사기로 채혈을 할 경우 피스톤은 너무 세게 잡아 당기지 마시고, 튜브에 담을때 튜브의 마개를 열어 주사바늘을 빼고 천천히 tube벽면에 흘려 넣습니다.
또한, 채혈 후 30분 정도 경과 후 원심분리하여 주십시오.




:고지혈 혼탁(Lipemic)
식사 후에 채혈 할 경우 검체의 혼탁이 올 수 있습니다. 이러한 검체의 혼탁은 지질 검사의 결과에 영향을 주어 부정확 결과 (비특이적 수치 상승)를 초래합니다. 따라서, 검체항목에 따라 혈액채취를 12시간 공복유지 후에 합니다.




:뇨
1) 단회뇨(Random urine)
아침 첫뇨의 중간뇨를 받아 가능한 한 빠른시간 내에 의뢰해 주시고 수거 전까지 냉장보관하여 주십시오.

2) 24시간 뇨(24 Hours urine)
아침 08 : 00시에 소변을 보게 하여 버린 후 다음날 아침 08 : 00시 소변까지 모두 24hrsU 채뇨봉투에 받습니다.
(대변시의 소변도 포함).
검사항목 중 대부분은 냉장보관으로도 가능하나, 반드시 보존제를 넣어야 하는 경우에 지정된 보존제 정도를 용기에 담아서 보내주십시오. (축뇨량을 반드시 기입요망)

 

:체액
체액(Body fluid) 중 채취 후 응고되기 쉬운 Pleural, Ascitic, Joint fluid 등은 응고(CSF 제외)되면 Cell count 나 Chemistry 검사종목에 큰 오차가 생깁니다.